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12.- ENFERMEDADES TRANSMITIDAS
POR PRIONES
12. 1.- INTRODUCCIÓN
En 1982 Stanley B. Prusiner
propuso el nombre de "Prion" (partículas de proteína
infecciosa) al agente vinculado a un grupo de desórdenes degenerativos
del sistema nervioso central (encefalopatías espongiformes), que
comparten características patológicas crónicas y progresivas.
Las enfermedades originadas por
priones adquieren una significación especial desde la aparición
en el Reino Unido, en 1996, de la epidemia conocida como "enfermedad
de las vacas locas" y la posterior descripción en personas jóvenes
de una nueva variante de la enfermedad de Creutzfeldt-Jakob.
Las encefalopatías espongiformes
afectan a los animales (Scrapie en cabras y ovejas, "enfermedad de
las vacas locas" en bovinos, etc.) y al hombre, las cuales podemos
clasificar en:
| |  | Esporádicas: Enfermedad de Creutzfeldt Jakob: clásica, variante
de Heidenhain, variante de Brownell-Oppenheimer y Panencefalopática. |
| |  | Adquiridas: |
| |  | Kuru (canibalismo). |
| |  | Enfermedad de Creutzfeldt-Jakob yatrogénica: hormona de crecimiento,
gonadotrofina, trasplante de cornea, electrodos (EEG) de implantación
directa, intervenciones en neurocirugía fundamentalmente con implante
de duramadre. |
| |  | Variante de la enfermedad de Creutzfeldt-Jakob. |
| |  | Familiares: |
| |  | Enfermedad de Creutzfeldt-Jakob familiar. |
| |  | Síndrome de Gerstmann-Sträussler-Scheinker. |
| |  | Insomnio familiar fatal. |
| |  | Enfermedades por priones atípicas (mutaciones) En la forma habitual,
la fase de incubación es larga (10 a 35 años) y durante este
período no existe ningún test diagnóstico. Durante
la fase clínica, el diagnóstico se confirma únicamente
por examen histopatológico del sistema nervioso central (SNC): espongiosis
con vacuolización neuronal, proliferación astrocitaria e hipertrofia
de la glia sin signos inflamatorios ni desmielinización. Esta espongiosis
corresponde a la acumulación de una isoforma patológica (PrPcs)
de una proteína normal del SNC que es la proteína P. |
Los priones están constituidos
por partículas proteínicas, se estima que el agente es más
pequeño que la mayoría de los virus y muy resistente al calor,
a los rayos ultravioleta, a las radiaciones ionizantes, y a los desinfectantes
que habitualmente inactivan a bacterias y virus.
El factor común de estas enfermedades consiste en que a consecuencia
de la infección una proteína del huésped (PrPc) es
convertida a la forma (PrPcs) que es resistente a la degradación
por digestión proteolítica y en consecuencia se acumula dentro
del huésped.
La escasa incidencia de las enfermedades por priones en nuestro medio dificulta
sospechar y, por este motivo, poner en práctica las medidas de prevención
específicas ante los posibles casos.
12. 2.- EPIDEMIOLOGÍA
La Organización Mundial
de la Salud (OMS), establece una clasificación de los órganos,
tejidos y/o fluidos según el grado de infectividad encontrado en
los estudios experimentales en las diferentes especies:
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INFECTIVIDAD
|
TEJIDO
|
| ALTA |
Cerebro Ojo Médula espinal Glándula
pituitaria Bazo Duramadre Timo Amígdalas Ganglio linfático periféricos
Tejido linfático Placenta y membranas Intestino |
| MODERADA O BAJA |
Nervios periféricos Líquido cefalorraquídeo
Páncreas Hígado Glándula suprarrenal Pulmón |
| NO SE HAN RELACIONADO CON INFECTIVIDAD
EN NINGUNA ESPECIE |
Leche Saliva Piel Semen Orina Músculo
esquelético Heces Sangre* Riñón |
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* Se ha detectado transmisión postransfusional
del prión en ovinos.
12. 3.- PACIENTES DE RIESGO
Conocida la infectividad de
los órganos, tejidos y/o fluidos, debemos tener en cuenta como
potenciales transmisores de estos agentes en el ámbito hospitalario
los pacientes que:
| |  | Sean diagnosticados de ECJ o cualquier otra enfermedad por priones. |
| |  | Presenten signos o síntomas de sospecha de padecer estas enfermedades. |
| |  | Hayan sido intervenidos neuroquirúrgicamente y más aún
si han recibido implantes de duramadre intracraneal; se les haya administrado
algún tratamiento con hormonas de crecimiento, gonadotropinas o
extractos cerebrales. |
| |  | Sean familiares en primer grado de una persona fallecida por estas enfermedades
priónicas o con gran probabilidad de haberla padecido. |
Dada la baja incidencia de estas
enfermedades en la población general, la posibilidad de ser origen
de una contaminación hospitalaria a otros pacientes se considera
mínima.
12. 4.- PROCEDIMIENTOS DE RIESGO
Los procedimientos, considerados
de riesgo, son los invasivos en los que se entra en contacto con órganos
y tejidos con un alto, moderado o bajo título de infectividad según
la clasificación de la OMS. Los procedimientos no invasivos no
requieren precauciones especiales.
12. 5.- MEDIDAS PREVENTIVAS EN LA ASISTENCIA
A PACIENTES CON ESTAS ENFERMEDADES O
CON SOSPECHA DE PADECERLAS
Medidas generales
| |  | No es necesaria habitación individual, aislamiento específico
ni trato clínico rutinario diferenciado. Es imprescindible, como
en cualquier otro paciente, aplicar las Precauciones Universales. |
| |  | La mayor infectividad está asociada a las muestras procedentes
del SNC. La recogida de biopsias cerebrales y LCR debe realizarse con
guantes y protección ocular. |
| |  | Siempre que sea posible se ha de utilizar, para cualquier actividad
a realizar en estos enfermos, material de un solo uso (desechable), en
caso de que no sea factible seguir las medidas recomendadas en el apartado
de limpieza-esterilización. |
| |  | Utilizar hipoclorito sódico (lejía) para la limpieza de
suelos y superficies contaminados por salpicaduras, derrames, tejidos
y fluidos potencialmente contaminados. La lejía se utilizará
a concentraciones de 20.000 ppm (2% de cloro libre) que se logra con una
dilución del 50% de agua y, 50% de lejía. También
se pude utilizar hidróxido sódico 1N o 2N. |
Limpieza, desinfección y esterilización
del material médico
Los priones son resistentes
a múltiples procedimientos de inactivación y desinfección:
calor seco, ultrasonidos, rayos ultravioleta, radiaciones ionizantes,
alcoholes, formaldehído, glutaraldehído, iodóforos,
óxido de etileno, peróxido de hidrógeno, derivados
fenólicos e incluso la esterilización en autoclave de vapor
utilizada habitualmente para ciclos de textil o instrumental.
Cualquier material reutilizable
que se haya usado en estos pacientes y especialmente el instrumental médico
quirúrgico que haya estado en contacto con órganos o tejidos
requiere un cuidado, manejo y tratamiento posterior especial que puede
establecerse en 3 etapas:
Limpieza
| |  | Eliminación de impurezas y restos visibles en el material inmediatamente
después de utilizarlo. |
| |  | Inmersión durante 15 minutos en un detergente desincrustante
alcalino (que posteriormente se eliminará por incineración). |
| |  | No utilizar detergentes que contengan aldehidos (glutaraldehidos, formaldehidos,
formol etc) ya que estan formalmente contraindicados por que facilitan
una acción protectora frente al resto de los procedimientos a utilizar
con posterioridad. |
| |  | El material utilizado en estos pacientes deberá llegar a la Central
de Esterilización: |
| |  | Separado del resto del material médico-quirúrgico |
| |  | Protegido con una bolsa impermeable |
| |  | Solicitando reprocesado en ciclo de priones |
| |  | El personal encargado de la etapa de lavado irá protegido adecuadamente:
guantes, mascarilla con protector facial y delantal impermeable. |
| |  | Esta etapa es muy importante, reduce notablemente la carga de infectividad
y condiciona la eficacia de las etapas siguientes. |
Descontaminación química con Hipoclorito
sódico
| |  | Hipoclorito sódico (lejía común): uUtilizar concentraciones
de 20.000 ppm de cloro libre (2% de cloro libre) durante 1 hora a temperatura
ambiente (20º C). Hay autores que recomiendan hasta 2 horas (2% de
cloro libre se logra con una dilución a la mitad de la lejia común). |
| |  | También ese válido el hidróxido sódico (sosa
caústica): utilizar concentraciones 1-2 N durante 1 hora, aunque
hay autores que aconsejan hasta 2 horas. |
| |  | Aclarar con abundante agua. Considerar las características de
corrosividad, compatibilidad, irritación etc de cada uno de estos
preparados, así como su estabilidad. Es preferible su preparación
el mismo dia de uso |
Esterilización por calor húmedo (vapor de agua)
| |  | El método recomendado para la esterilización de estos
agentes, hasta el momento actual, es el de esterilización por calor
humedo en autoclave de prevacio. La descontaminación química
no garantiza la inactivación total.
|
| |  | Utilizar un ciclo a una temperatura de 134º C (+4/-0º C, 3.10
kgs/cm2) durante 18 minutos, (de meseta de esterilización real).
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| |  | Como alternativa se pueden utilizar 6 ciclos separados de 3 minutos
de meseta de esterilización cada uno a la misma temperatura de
134º C (+4/-0º C, 3.10 kgs/cm2). |
| |  | En el caso de utilizar un autoclave de desplazamiento gravitatorio ha
de usarse un ciclo de 1 hora a la temperatura de 132º C, (3.10 kgs/cm2). |
Tratamiento de los residuos sanitarios procedentes
de estos enfermos
Se debe destruir por incineración:
| |  | Todo el material desechable utilizado en la atención (agujas,
jeringas, sistemas de recolección de muestras, guantes, mascarillas).
Todo el material desechable utilizado en la realización de las
autopsias (hojas de bisturí, mascarillas, guantes de goma, delantal,
sábanas de plástico y hojas de celulosa empleadas en el
aislamiento del cadaver o del cerebro, tanto durante su extracción
como durante los procedimientos de corte y toma de muestra). |
| |  | Los restos de tejido cerebral, después de efectuado el diagnóstico
neuropatológico, junto con la solución contaminada de formol
(se incinerará en el mismo contenedor en el que se guardaron).
Si la autopsia ha sido más extensa que la extracción del
cerebro, se destruirán todos los restos de los tejidos, del mismo
modo que los cerebrales, después de haberse realizado el diagnóstico
anatomopatológico. |
| |  | Para la eliminación de líquidos (fijadores, solventes.etc),
si son pequeños volúmenes de líquido deben ser convenientemente
absorbidos con serrín y luego incinerados en sus contenedores.
Cantidades mayores deben ser directamente introducidas en contenedores
e incinerados. Las soluciones de formol deben ser eliminadas siempre por
incineración. Los líquidos compuestos fundamentalmente por
agua pueden descontaminarse por autoclave o bien mediante tratamiento
con hipoclorito sódico hasta alcanzar una concentración
de 20.000 ppm de cloro. |
| |  | Los electrodos subcutáneos o intramusculares y los electrodos
intracraneales serán destruidos por incineración despues
de su uso en un paciente. En los electrodos blandos de contacto de Electroencefalografía
(EEG), sus almohadillas, podrían ser destruidas despues de cada
uso si su calidad es dudosa después de la desinfección. |
| |  | La placenta y las membranas de los recién nacidos procedentes
de madres que hubieran recibido hormonas hipofisarias o implantes de duramadre. |
12. 6.- ACTITUD ANTE EXPOSICIONES ACCIDENTALES
A MATERIAL BIOLÓGICO
Limpieza y/o desinfección de la zona
expuesta | |  | En el caso de exposición percutánea (Pinchazo/corte)
irrigar abundantemente la herida con una solución de hipoclorito
sódico (Lejía) al 0,5 % durante 5 a 10 minutos y aclarar
con agua. |
| |  | Si la exposición es no parenteral, lavar la zona durante 5-10
minutos con una solución de hidróxido sódico 1N o
bién hipoclorito sódico (Lejía) al 0,5 % durante
5 a 10 minutos y aclarar con agua. |
| |  | Si la exposición es en mucosas ocular u oral lavar abundantemente
con agua o solución salina. |
Declaración del accidente
Cualquier accidente se registrará en el Servicio de Prevención
de Riesgos Laborales en presencia del accidentado, para su tipificación
y seguimiento a los efectos clínicos y administrativo-laborales.
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